WB检测常见问题与解答

一、WB的实验原理和应用？

WB（Western blot）即蛋白印迹或免疫印迹（immunoblotting），是一项在分子生物学、生物化学、免疫学等领域中应用非常广泛的技术。这一技术利用抗体与组织或细胞样品中特定蛋白的特异性结合作用，根据显色条带的位置和强弱实现蛋白鉴定和表达分析。

WB技术具有SDS-PAGE的高分辨力和固相免疫测定的高特异性和敏感性。选用合适的内参抗体能够校正蛋白定量和上样过程中的误差，通过灰度计量可以定性或定量分析不同样品中蛋白表达情况。

科沿有道提供WB检测技术服务，提供编码基因表达水平的确凿证据，用于特定基因调节、基因功能研究，也可以作为蛋白芯片、蛋白质谱的验证实验。

二、WB对于提供的样本有什么要求？

提供的细胞数量保证5x10^6或更多，动物组织至少200mg以上，植物组织1g以上，须在取材后（最好经液氮速冻）保存于-80℃，干冰运输。取材时需尽量避免较多血液、泥土等干扰保留在材料表面，可用生理盐水等迅速清洗后速冻。

检测抗体数量增多时样本质量须随之增加，珍贵样本在项目完成后剩余的可返还。

三、WB实验中一抗使用量需要多少？

根据不同抗体的效价、浓度、亲和力等因素不同，多数商品化抗体稀释比例在1:200-1:2000左右，可参看抗体说明书进行预实验后调整。尽量提供足量的抗体（也可以选择由科沿有道提供一抗），项目完成后科沿有道可以寄返剩余抗体。

四、WB实验中的抗体可以通用于IHC等其他实验吗？

WB过程中目的蛋白被变性，抗体识别目的蛋白的线性表位，绝大多数能应用于IHC、IP、FACS等实验的抗体都能够用于WB实验，但反之并不一定能适用。

五、为什么有时目的条带大小同理论预期分子量有偏差？

当条带所示的实际大小同理论有偏差时，可能由以下一些原因导致：蛋白发生如磷酸化、糖基化等翻译后修饰时条带会上移，蛋白发生剪切（如前体）时条带会下移，蛋白存在不同的可变剪切体或亚型，强相互作用大分子存在时变性不彻底。

此外，WB实验中使用的预染蛋白marker由于携带染料程度不稳定的原因，也可能导致表观分子量与理论预期出现偏差。

六、为什么主带之外有时会出现杂带？

导致杂带出现的可能原因包括：抗体特异性不足，目的蛋白存在不同修饰状态或有剪切降解形式，一抗或二抗使用过量，蛋白上样量过大，曝光时间过长，膜漂洗不充分，等原因。

科沿有道会通过条件优化尽量减少杂带出现，但当抗体或样品特性造成少量杂带存在时，只要不影响主目的条带判别并不影响数据图片的应用。

七、为什么有时胶片会出现明显较深的背景？

在通过条件优化排除诸如封闭不充分、样品中存在杂质、抗体过量、漂洗不充分等实验原因之外，当特异性识别的目的条带信号太弱时，为了显示出目的条带而不得不延长曝光时间，随之使得背景变脏，此时关键点在于整个反应的“性噪比”太低，最好换用特异性、亲和力更佳的一抗。

八、为什么有时候条带会出现拖带或者弯曲？

在使用特定裂解缓冲液时，或者一些植物或脂肪含量高的样品中成分较复杂，会对电泳条带产生干扰；样品变性不彻底、有降解发生、修饰、上样过大等情况会导致拖带，凝胶不均匀、电泳装置渗漏、电压/电流过大、胶孔不平等原因会导致条带弯曲，当很小分子量的蛋白电泳到接近凝胶下沿时也会出现条带扭曲。